重测序分析学习生物信息学

snpEff注释变异位点信息

2021-04-20  本文已影响0人  DumplingLucky

SnpEff是一种变体注释和效果预测工具,它注释和预测遗传变异的影响(例如氨基酸变化)。

1. 软件安装

#方法一:软件下载
wget https://downloads.sourceforge.net/project/snpeff/snpEff_latest_core.zip
#解压缩
unzip snpEff_latest_core.zip
#方法二:conda下载
conda install -y snpeff

2. 运行

2.1 构建SnpEff数据库

SnpEff软件的运行,首先需要基因组fasta序列信息和GTF注释信息,来构建数据库。
配置文件步骤如下:

1.在~/snpEff/目录中,创建一个文件夹:data
2.在~/snpEFF/data目录下,创建两个文件夹
    AT_10/   genomes/
    这两个文件夹中,分别放置了GTF文件和基因组文件
    genes.gtf sequences.fa
3.编辑~/snpEff/snpEff.config文件
    在文件的最后一行添加信息:
    AT_10.genome: AT

构建数据库步骤如下:

java -jar ~/snpEff/snpEff.jar build -c ~/snpEff/snpEff.config -gtf22 -v AT_10

#参数说明
java -jar: Java环境下运行程序
-c snpEff.config配置文件路径
-gtf22 设置输入的基因组注释信息是gtf2.2格式
-gff3 设置输入基因组注释信息是gff3格式
-v 设置在程序运行过程中输出的日志信息
最后的AT_10参数 设置输入的基因组版本信息,和~/snpEff/snpEff.config配置文件中添加的信息一致
2.2 使用SnpEff进行注释
java -Xmx10G -jar ~/snpEff/snpEff.jar eff -c ~/snpEff/snpEff.config AT_10 positive.vcf > positive.snp.eff.vcf -csvStats positive.csv -stats positive.html

最终会产生四个文件 positive.snp.eff.vcf / positive.html / positive.csv / positive.genes.txt

3. 变异注释可视化(例如检测某基因X的基因区变异)

3.1 输入文文件

.snpEff文件:

19  63539072    A   C   downstream_gene_variant MODIFIER        
19  63539667    T   C   synonymous_variant  LOW p.Leu63Leu
19  63539866    G   C   missense_variant    MODERATE    p.Gly129Ala
19  63539870    G   A   synonymous_variant  LOW p.Ala130Ala
19  63539889    A   C   missense_variant    MODERATE    p.Ile137Leu

该文件由注释结果文件positive.snp.eff.vcf改变格式产生:

grep -v "#" positive.snp.eff.vcf | awk '{print $1"\t"$2"\t"$4"\t"$5}' > snpEff1
grep -v "#" positive.snp.eff.vcf | awk '{print $8}' |awk -F"ANN=" '{print $2}' | awk -F"|" '{print $2"\t"$3"\t"$11}' > snpEff2
paste -d "\t" snpEff1 snpEff2 > positive.snpEff
rm snpEff1 snpEff2

.table文件:

AFG-L1  CGGTCCCAAGGCCCCCACGNNTCNNNNNNTTGG
AFG-L3  CGGTCCCAAGGCCCCCACGAATCNCTAAATTGG
AT18487A    CGGTCCNNAGGCCCCCACGGGTCCCTACNTTGG
AT18488A    CGGTCCCAANGNNNNNNCGGGTCCCWAMRTTGG
AT18489A    CGGTCCNNAGGCCCCCACGGGTCCNNAAATTGG

该文件包含两列,第一列是样本名,第二列是geneX的基因区变异内容。可以通过Tassel将VCF转换成table格式。


Nucleotide Codes
(Derived from IUPAC)...
A     A:A
C     C:C
G     G:G
T     T:T
R     A:G
Y     C:T
S     C:G
W     A:T
K     G:T
M     A:C
+     +:+ (insertion)
0     +:-
-     -:- (deletion)
N     Unknown
3.2 画图
#加载包
library(ggplot2)
library(ggseqlogo)
substrRight <- function(x){
  num = nchar(x)-2
  gsub('[0-9.]', '', substr(x, 6, nchar(x)))
}
#读取输入文件
fasta_file = read.table("geneX.table",header=F,stringsAsFactors = F)
fasta = fasta_file[,2]
snpEff <- read.table("geneX.snpEff",header=F,stringsAsFactors = F,fill=TRUE,sep="\t")
#展示变异内容
p1 <- ggseqlogo(fasta,method="prob")+theme(axis.text.x = element_blank())+labs(title = "geneX")+theme(plot.title = element_text(hjust = 0.5,size = 25))
Ref <- as.data.frame(snpEff$V3)
colnames(Ref) <- "letter"
Alt <- as.data.frame(snpEff$V4)
colnames(Alt) <- "letter"
if(dim(snpEff)[2] >6){
    Old <- as.data.frame(substring(snpEff$V7,3,5)) 
    colnames(Old) <- "letter"
    Pos <- as.data.frame(gsub('[a-zA-Z.*]', '', snpEff$V7))
    colnames(Pos) <- "letter"
    New <- as.data.frame(substrRight(snpEff$V7))
    colnames(New) <- "letter"
    all <- rbind(Ref,Alt,Old,Pos,New)
    num <- dim(Ref)[1]
    aln <- data.frame(
      letter = all,
      Type=rep(c("Ref","Alt","Old","Pos","New"), each=num),
      x=rep(1:num,5)
    )
#展示注释信息
 p2 <- ggplot(aln, aes(x, Type)) +
      geom_text(aes(label=letter,)) +
      scale_y_discrete(limits=c("New","Pos","Old","Alt","Ref"))+
      scale_x_continuous(breaks=1:10, expand = c(0.105, 0)) + xlab('') +
      theme_logo() +
      theme(legend.position = 'none', axis.text.x = element_blank())
  } else{
    all <- rbind(Ref,Alt)
    num <- dim(Ref)[1]
    aln <- data.frame(
      letter = all,
      species=rep(c("Ref","Alt"), each=num),
      x=rep(1:num,2)
    )
p2 <- ggplot(aln, aes(x, Type)) +
      geom_text(aes(label=letter,),check_overlap = TRUE) +
      scale_y_discrete(limits=c("Alt","Ref"))+
      scale_x_continuous(breaks=1:10, expand = c(0.105, 0)) + xlab('') +
      theme_logo() +
      theme(legend.position = 'none', axis.text.x = element_blank())  
  }
snpEff$impact <- NA
snpEff[which(snpEff$V6=="HIGH"),8] <- 4
snpEff[which(snpEff$V6=="MODERATE"),8] <- 3
snpEff[which(snpEff$V6=="LOW"),8] <- 2
snpEff[which(snpEff$V6=="MODIFILER"),8] <- 1
bp_data <- data.frame(
    x=snpEff$V2,
    Impact=snpEff$impact
  )
#展示注释的效应大小
p3 <- ggplot(bp_data, aes(factor(x), Impact))+
    geom_bar(stat = "identity", fill="grey")+
    theme_logo()+
    xlab("")+
    theme(axis.text.x = element_text(angle = 90))
suppressMessages(require(cowplot))
p <- plot_grid(p1,p2,p3,ncol = 1, align = "v")
print(p)

结果展示


geneX

参考:
https://www.jianshu.com/p/a6e46d0c07ee

上一篇 下一篇

猜你喜欢

热点阅读