m6ASeq RNA甲基化测序甲基化

m6A图文复现02-数据下载和质控

2021-07-14  本文已影响0人  信你个鬼

上一篇文章我们提到作者有非常好的代码资源,但是数据没有权限下载。因此,我又重新找了一篇文献,使用这个文章的数据来进行m6A图文复现。数据相关文献简要介绍如下:

例子来自于发表exomePeak这个软件的文献中提供,相应文献为:doi:10.1038/nn.3449,于30 June 2013发表在nature NEUROSCIENCE上,比较老的数据了。现在m6A的实验方法也早已经更新迭代,得到的测序数据也一般以链特异性、双端150bp为主流。

image-20210114211643359.png

1 数据背景

使用Fto缺陷和野生型的小鼠中脑组织,每个表型三个生物学重复进行MeRIP-Seq。

FTO,也称为ALKBH9,是一个去甲基化酶,属于α-KG依赖的加双氧酶ALKB家族蛋白。FTO最初受到关注,是在GWAS研究中,发现它与肥胖相关【Science. Jun 1;316(5829):1341-5,Science. May 11;316(5826):889-94】,然而它的具体功能,作用底物等,一直是未知的。2011年12月,何川教授研究组在Nature Chemical Biology发表研究N6-Methyladenosine in nuclear rna is a majorsubstrate of the obesity-associated FTO,发现FTO主要定位在细胞核中,是RNA的m6A修饰的去甲基化酶。FTO是第一个被发现的RNA去甲基化酶。

这个数据的文章依然有m6A领域大佬的身影:Samie R Jaffrey ,以及与他同一个学校和单位的Kate D Meyer。他有一篇非常有名的文章大家可以去看看,主要描绘了m6A在mRNA上的分布以及特征:Meyer, K.D. et al. Comprehensive analysis of mRNA methylation reveals enrichment in 3′ UTRs and near stop codons. Cell 149, 1635–1646 (2012) 。

同一时期开创了m6A研究热潮的还有两个大佬:Dan Dominissini 和 Sharon Moshitch-Moshkovitz,这两个人在2012年,2013年发表了两篇文章,第一次从转录组水平上,大范围、高通量地鉴定了人和小鼠m6A的甲基化水平,这两篇文章是:Nature. 2012 Apr 29;485(7397):201-6 和 doi:10.1038/nprot.2012.148

2 数据下载

得到数据编号GSE47217,ENA数据库使用:PRJNA205149 ,再用ascp下载。

# 从ENA数据库得到fastq下载链接
cat -A fastq.url
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR866/SRR866991/SRR866991.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR866/SRR866992/SRR866992.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR866/SRR866993/SRR866993.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR866/SRR866994/SRR866994.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR866/SRR866995/SRR866995.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR866/SRR866996/SRR866996.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR866/SRR866997/SRR866997.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR866/SRR866998/SRR866998.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR866/SRR866999/SRR866999.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR867/SRR867000/SRR867000.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR867/SRR867001/SRR867001.fastq.gz$
fasp.sra.ebi.ac.uk:/vol1/fastq/SRR867/SRR867002/SRR867002.fastq.gz$

# 使用ascp下载,下载到你所在的当前目录
key_ssh=~/biosoft/miniconda3/envs/rna/etc/asperaweb_id_dsa.openssh
cat  fastq.url |while read id
do
  ascp -k 1 -QT -l 300m -P33001 -i $key_ssh era-fasp@${id} ./ 
done

数据下载完之后有一个非常重要的步骤,就是完整性的检验。

md5文件信息同样来自ENA数据库下载的数据信息表格中获取,处理成以下格式。

# 验证数据的完整性, 第一列为md5值,第二列为文件名,中间为两个空格
# md5.txt内容如下:
cat md5.txt
95293cada49264ef20bae77c61056d6c    SRR866991.fastq.gz
7c60f24668df87641185d768342b6667    SRR866992.fastq.gz
c3abffe6eb7c3ea61245e78db9772174    SRR866993.fastq.gz
ab863dbf38c2e639dd5823f58e07e9ee    SRR866994.fastq.gz
41326299f4e5d7867758dd233459c1e9    SRR866995.fastq.gz
1c6e230ac4806e0dcad6927c59e5ff96    SRR866996.fastq.gz
21dcd0adde84059c9fef056078a6faa8    SRR866997.fastq.gz
e08620b138fdc7d33a8f72d949ff8ad4    SRR866998.fastq.gz
199618b6325b007213d9bb3896181f14    SRR866999.fastq.gz
7b23cb95ffdf90f23e2784f31ad712de    SRR867000.fastq.gz
3d14c4c8fcd95e5fa4a2c379d23f3088    SRR867001.fastq.gz
f6d46a57cf66a73d6ea4e1a81e81b06d    SRR867002.fastq.gz

下载了一晚上,终于下载好了,检验结果都ok

# 检验结果都ok
md5sum -c md5.txt > check
cat check
SRR866991.fastq.gz: 确定
SRR866992.fastq.gz: 确定
SRR866993.fastq.gz: 确定
SRR866994.fastq.gz: 确定
SRR866995.fastq.gz: 确定
SRR866996.fastq.gz: 确定
SRR866997.fastq.gz: 确定
SRR866998.fastq.gz: 确定
SRR866999.fastq.gz: 确定
SRR867000.fastq.gz: 确定
SRR867001.fastq.gz: 确定
SRR867002.fastq.gz: 确定

此外:早期的m6A数据测序片段偏短并且大多数都是单端测序。

3 数据质控和过滤

在确保数据完整性之后,我们对原始数据进行一下简单的质量评估。这里主要还是使用fastqc软件进行简单的评估。

mkdir qc
fastqc -t 20 -o qc/ SRR*.fastq.gz

# 使用MultiQc整合FastQC结果
multiqc *.zip

qc结果:

image-20210713104734504.png

查看所有样本得整合报告:multiqc_report.html

数据有一些N:

image-20210713105006818.png

有一个样本接头含量比较高:


image-20210713105040033.png

有两个两本的GC含量稍微有点异常:

image-20210713105115926.png

有两个样本的数据重复率偏高:


image-20210713105224286.png

这就是以上数据的一个简单评估结果,数据整体Q30挺好,就是还有些接头,N碱基含量,GC分布异常等问题。GC异常的问题,我们后面专门再说,数据质量的好坏与前期样本质量,实验环节息息相关。但无论数据是好是坏,我们生信端能做的就是尽量将异常给去掉来保证后面分析的结果。当然,有钱的可以选择重新提取样本进行测序。

然后使用trim_galore进行过滤,数据读长比较短,我们这里保留大于15bp的reads。

mkdir cleandata

# 过滤
ls ../fastq/SRR*gz |while read id
do
    trim_galore --phred33 -q 25 -e 0.1 --length 15 --stringency 3 --fastqc  --max_n 3 -o ./ $id >${id}.log
done

# 过滤后的质控
multiqc *.zip   

数据到这里就得到了一个cleandata,后面就开始进行比对部分分析了。

image-20210713105537752.png

等待更新~

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