RNA-seq分析【康华同学】:优秀生物信息学博客

差异分析|使用limma包

2021-11-28  本文已影响0人  小杜的生信筆記

获取本章节数据和代码:关注微信公众号:小杜的生信筆記(ID:Du_Bioinformatics),回复关键词:limma差异分析

------------------------

基于R语言进行差异分析的包有很多个,比如我自己常用的有DESeq2limmaedge等等。我们本期的专题是进行各种包差异分析的专题。


本专题是使用limma包差异分析。

1.数据准备

差异分析是两两数据集间的比较,一个是对照组样本(CK),一个是处理组样本(Treat)

    CK01    CK02    CK03    T1  T2  T3
gene0001    56  46  91  36  19  28
gene0002    0   0   5   0   31  8
gene0003    4   0   6   2   2   0
gene0004    257 254 235 241 162 183
gene0005    30  17  22  27  9   75
gene0006    503 565 490 369 426 480
gene0007    201 82  62  296 206 189
gene0008    56  6   12  108 62  0
gene0009    6   10  9   13  8   14
gene0010    19  0   0   27  0   0
gene0011    0   0   0   0   0   0

<center>样本格式
</center>

注:数据样本根据自己实验数据决定


2.数据分析

2.1 导入所需的包

## 导入R包
library(limma)
library(dplyr)

2.2 加载数据

df <- read.table("Counts_data.txt", header = T, sep = "\t", row.names = 1, check.names = F)
head(df)

image.png

2.3 样本信息注释

list <- c(rep("Treat", 66), rep("CK",148)) %>% factor(., levels = c("CK", "Treat"), ordered = F)
##--------------
> head(list)
  CK Treat
1  0     1
2  0     1
3  0     1
4  0     1
5  0     1
6  0     1
.............
list <- model.matrix(~factor(list)+0)  #把group设置成一个model matrix
colnames(list) <- c("CK", "Treat")
df.fit <- lmFit(df, list)  ## 数据与list进行匹配

2.4 差异分析

df.matrix <- makeContrasts(tumor - normal, levels = list)
fit <- contrasts.fit(df.fit, df.matrix)
fit <- eBayes(fit)
tempOutput <- topTable(fit,n = Inf, adjust = "fdr")
> head(tempOutput)
               logFC  AveExpr         t      P.Value    adj.P.Val        B
gene11796 -1.2620803 5.551402 -8.392278 5.886136e-15 7.083964e-11 23.25729
gene7364  -0.9825962 7.471963 -7.598215 8.629186e-13 5.192613e-09 18.51600
gene11454 -1.3204341 6.238318 -7.368543 3.472935e-12 1.301549e-08 17.19354
gene11689 -1.0769861 4.967290 -7.331950 4.325880e-12 1.301549e-08 16.98503
gene11227 -1.2035217 5.925234 -7.263016 6.531456e-12 1.572122e-08 16.59390
gene3259  -2.3695741 9.467290 -6.962632 3.829470e-11 5.760959e-08 14.91576

到这部分,差异分析就结束了。对!! 没错就是这么简简单单...................



2.5 导出差异结果

## 导出所有的差异结果
nrDEG = na.omit(tempOutput) ## 去掉数据中有NA的行或列
diffsig <- nrDEG  
write.csv(diffsig, "all.limmaOut.csv")  

2.6 筛选差异基因

差异基因基因的筛选,我们一般是使用P值和LogFC筛选,常用的筛选标准P<0.05,|LogFC| > 1,这是最常规的筛选标准,如果你的数据差异较大,也可以更改P值和LogFC的大小。

## 我们使用|logFC| > 0.5,padj < 0.05(矫正后P值)
foldChange = 0.5
padj = 0.05
## 筛选出所有差异基因的结果
All_diffSig <- diffsig[(diffsig$adj.P.Val < padj & (diffsig$logFC>foldChange | diffsig$logFC < (-foldChange))),]
#---------------------
> dim(All_diffSig)
[1] 0 6

## 我们发现竟然没有差异基因,这是应该我这边的数据是随机的结果,如果你的数据有这样的问题,你需要在仔细检查一下哦。
## 我们为了下面的操作正常进行,我们选用的P值(未矫正)进行筛选。
All_diffSig <- diffsig[(diffsig$P.Value < padj & (diffsig$logFC>foldChange | diffsig$logFC < (-foldChange))),]
write.csv(All_diffSig, "all.diffsig.csv")  ##输出差异基因数据集
#-----------------
> dim(All_diffSig)
[1] 335   6
## 共有335个差异基因

7)筛选上调和下调的基因

diffup <-  All_diffSig[(All_diffSig$P.Value < padj & (All_diffSig$logFC > foldChange)),]
write.csv(diffup, "diffup.csv")
#
diffdown <- All_diffSig[(All_diffSig$P.Value < padj & (All_diffSig < -foldChange)),]
write.csv(diffdown, "diffdown.csv")

到这部分,我们差异分析就全部结束了。已经拿到差异文件,及上调和下调的基因文件。


3. 绘制火山图

在常规的差异分析之后,我们需要进行差异数据的可视化,火山图差异基因热图是最常用的可视化图形。

## 导入R包
library(ggplot2)
library(ggrepel)
##  绘制火山图
## 进行分类别
logFC <- diffsig$logFC
deg.padj <- diffsig$P.Value
data <- data.frame(logFC = logFC, padj = deg.padj)
data$group[(data$padj > 0.05 | data$padj == "NA") | (data$logFC < foldChange) & data$logFC > -foldChange] <- "Not"
data$group[(data$padj <= 0.05 & data$logFC > 1)] <-  "Up"
data$group[(data$padj <= 0.05 & data$logFC < -1)] <- "Down"
x_lim <- max(logFC,-logFC)

# 开始绘图
pdf('volcano.pdf',width = 7,height = 6.5)  ## 输出文件
label = subset(diffsig,P.Value <0.05 & abs(logFC) > 0.5)
label1 = rownames(label)

colnames(diffsig)[1] = 'log2FC'
Significant=ifelse((diffsig$P.Value < 0.05 & abs(diffsig$log2FC)> 0.5), ifelse(diffsig$log2FC > 0.5,"Up","Down"), "Not")

ggplot(diffsig, aes(log2FC, -log10(P.Value)))+
  geom_point(aes(col=Significant))+
  scale_color_manual(values=c("#0072B5","grey","#BC3C28"))+
  labs(title = " ")+
  geom_vline(xintercept=c(-0.5,0.5), colour="black", linetype="dashed")+
  geom_hline(yintercept = -log10(0.05),colour="black", linetype="dashed")+
  theme(plot.title = element_text(size = 16, hjust = 0.5, face = "bold"))+
  labs(x="log2(FoldChange)",y="-log10(Pvalue)")+
  theme(axis.text=element_text(size=13),axis.title=element_text(size=13))+
  str(diffsig, max.level = c(-1, 1))+theme_bw()

dev.off()

4. 绘制差异基因表达热图

注:本章节,我们是只使用count值进行热图绘制,后续的分子中,我们会对其进行优化

## 导入R包
library(pheatmap)

## 提取差异基因的表达量
DEG_id <- read.csv("all.diffsig.csv", header = T)  # 读取差异基因的文件
head(DEG_id)
## 匹配差异基因的表达量
DEG_id <- unique(DEG_id$X)
DEG_exp <- df[DEG_id,]
hmexp <- na.omit(DEG_exp)

## 样本注释信息 
annotation_col <- data.frame(Group = factor(c(rep("Treat", 66), rep("CK",148))))
rownames(annotation_col) <- colnames(hmexp)

##  绘制热图 
pdf(file = "heatmap02.pdf", height = 8, width = 12)
pheatmap(hmexp,
              annotation_col = annotation_col,
              color = colorRampPalette(c("green","black","red"))(50),
              cluster_cols = F,
              show_rownames = F,
              show_colnames = F,
              scale = "row", ## none, row, column
              fontsize = 12,
              fontsize_row = 12,
              fontsize_col = 6,
              border = FALSE)
print(p)
dev.off()
image.png

获取本章节数据和代码:关注微信公众号:小杜的生信筆記(ID:Du_Bioinformatics),回复关键词:limma差异分析

“小杜的生信筆記” 公众号、知乎、简书、B站平台,主要发表或收录生物信息学的教程,以及基于R的分析和可视化(包括数据分析,图形绘制等);分享感兴趣的文献和学习资料!

上一篇下一篇

猜你喜欢

热点阅读