RNA-seq(9):功能富集分析
2018-08-03 本文已影响7人
Y大宽
这部分开始进行基本的富集分析,两类
-
A:差异基因富集分析(不需要表达值,只需要gene name)
-
B: 基因集(gene set)富集分析(不管有无差异,需要全部genes表达值)
############################################################
A:差异基因富集分析(不需要表达值,只需要gene name)
############################################################
-----------先说富集什么-----------
- 最常用的基因注释工具是GO和KEGG注释,这基本上是差异基因分析一定做的两件事。GO可以在GO:BP(生物过程),GO:MF(分子功能),GO:CC(细胞组分)三个方面分别进行注释,用的比较多的是GO:BP,但其他两方面也很重要。
- 外还有一个软件不得不提,那就是IPA(Ingenuity pathway analysis),这是一个收费软件,有基本版和高级版。我个人觉得它的upstream regulator analysis还是很不错的。分子激活功能等也可以用用。另外一个就是它内置的热图功能。高级版我没用过,但是知道可以导出一些数据等。
-----------什么是富集(原理)-----------
富集的统计学基础是超几何分布,简单来说根据下面的Fisher精确检验(Fisher exact test)公式,对每个GO或KEGG term计算一个p值
p=(M/K)[(N-M)/(n-k)]/(N/n),其中
N:所有gene总数
n:N中差异表达gene的总数
M:N中属于某个GO term的gene个数
k: n中属于某个GO term的gene个数
p:表示差异表达gene富集到这个GO term上的可信程度
- 当p<0.05或0.01,则认为差异表达gene显著到这个GO term上(自己定义p值)
- 意义:提供的信息更集中,更有意义
---------------拿什么来富集---------------
得到的差异表达基因列表就可以,也就是说不需要其他的值
---------------用什么工具富集--------------
只能说实在是太多太多了。。。。但是用的时候要小心,因为你多用几个工具,即使设定同样的p值也会发现结果有出入,有时还差异挺大。
1 按使用方式来说(简单度)有3种
- (1)在线版:最主流的就是DAVID,各种级别杂志总见其身影,使用非常简单,不再赘述。另外还有Gather,GOrilla,revigo,还有很多很多我就不在贴了。网页版有网页版的好处,可以先大概看下自己筛选的genes。另外很多工具有很好的可视化功能,自己一一去探索吧。
- (2)客户端版:IPA(IPA不是用的GO和KEGG数据库)和FUNRICH,后者更新速度很慢,但里面有好玩又实用的功能,并且可以加载自己的数据。
- (3)R包:介绍一个就行了,那就是Y叔的clusterProfiler,我论文中的富集功能很多都是用这个包做的(还有的用了IPA)。
##########################################################
B: 基因集(gene set)富集分析(不管有无差异,需要全部genes表达值)
##########################################################
-
好处:可以发现被差异基因舍弃的genes可能参与了某重要生理过程或信号通路(稍后我会把以前手写的GSEA原理和结果意义解读发上来)
-
工具:GSEA
-
使用方法:R(还是clusterProfiler)或客户端
-------------------具体操作---------------------
#enrichment analysis using clusterprofiler package created by yuguangchuang
library(clusterProfiler)
library(DOSE)
library(org.Mm.eg.db)
#get the ENTREZID for the next analysis
setwd("F:/rna_seq/data/matrix")
sig.gene<-read.csv(file="DEG_treat_vs_control.csv")
head(sig.gene)
gene<-sig.gene[,1]
head(gene)
gene.df<-bitr(gene, fromType = "ENSEMBL",
toType = c("SYMBOL","ENTREZID"),
OrgDb = org.Mm.eg.db)
head(gene.df)
GO富集分析:
#Go classification
#Go enrichment
ego_cc<-enrichGO(gene = gene.df$ENSEMBL,
OrgDb = org.Mm.eg.db,
keyType = 'ENSEMBL',
ont = "CC",
pAdjustMethod = "BH",
pvalueCutoff = 0.01,
qvalueCutoff = 0.05)
ego_bp<-enrichGO(gene = gene.df$ENSEMBL,
OrgDb = org.Mm.eg.db,
keyType = 'ENSEMBL',
ont = "BP",
pAdjustMethod = "BH",
pvalueCutoff = 0.01,
qvalueCutoff = 0.05)
barplot(ego_bp,showCategory = 18,title="The GO_BP enrichment analysis of all DEGs ")+
scale_size(range=c(2, 12))+
scale_x_discrete(labels=function(ego_bp) str_wrap(ego_bp,width = 25))
gobp.jpeg
#KEGG enrichment
install.packages("stringr")
library(stringr)
kk<-enrichKEGG(gene =gene.df$ENTREZID,
organism = 'mmu',
pvalueCutoff = 0.05)
kk[1:30]
barplot(kk,showCategory = 25, title="The KEGG enrichment analysis of all DEGs")+
scale_size(range=c(2, 12))+
scale_x_discrete(labels=function(kk) str_wrap(kk,width = 25))
dotplot(kk,showCategory = 25, title="The KEGG enrichment analysis of all DEGs")+
scale_size(range=c(2, 12))+
scale_x_discrete(labels=function(kk) str_wrap(kk,width = 25))
kegg.jpeg
keggdot.jpeg
# Gene Set Enrichment Analysis(GSEA)
# 获取按照log2FC大小来排序的基因列表
genelist <- sig.gene$log2FoldChange
names(genelist) <- sig.gene[,1]
genelist <- sort(genelist, decreasing = TRUE)
# GSEA分析
gsemf <- gseGO(genelist,
OrgDb = org.Mm.eg.db,
keyType = "ENSEMBL",
ont="BP"
)
# 查看信息
head(gsemf)
# 画出GSEA图
gseaplot(gsemf, geneSetID="GO:0001819")
gsea.jpeg