m6ASeq RNA甲基化测序DNase-seq

m6A图文复现07-Peak结果以及分布特征图

2022-01-06  本文已影响0人  信你个鬼

上一期提到使用exomePeak2进行m6A的Peak Calling,结果如下,每个样本一个结果:

├── ADDInfo
│ ├── ADDInfo_GLM_allDesigns.csv:Peak识别过程中的一些模型统计参数值
│ ├── ADDInfo_ReadsCount.csv:每个Peak的count值
│ └── ADDInfo_RPKM.csv:每个peak的RPKM值
├── Mod.bed :peak的bed格式
├── Mod.csv:peak的csv格式
├── Mod.rds:peak的Rdata格式
└── RunInfo.txt:运行过程中的一些参数文件

其中Mod.csv与Mod.bed前12列相同,bed为bed12,具体每一列如下,exomePeak2的结果不仅直接对每一个peak进行了基因注释,还输出了对应Peak的IP与Input样本的count值与RPKM值。筛选Peak主要根据pvalue或者padj。默认为pvalue<1e-05

image

这一列作为重点给予以下说明:

这一列很多人会有个误解,主要跟作者给的注释也有一定关系

包中的注释是这个样子的:

log2FC_cutoff a numeric value for the cutoff on log2 IP over input fold changes in peak calling; default = 0.

看着就是每一个Peak的IP样本中count/ Input样本中的count之后的log2值,即倍数关系

但是,当用户设置了这个参数,比如log2FC_cutoff=1的时候,发现结果中依然会有小于1的结果,后来给作者写信,给出答复如下,供大家参考:

回复1:

函数中的p_cutoff和log2FC_cutoff其实是peak calling时设定的阈值,exomePeak2的算法是这样的:
先在外显子组上生成划窗,对每个划窗收集到的IP / input 样本count做统计检验,并对其p-value (one-sided) 和 log2FC进行cut (即p_cutoff和log2FC_cutoff所指定的),显著的划窗会被merge成为peak region,并再次count和计算统计值。
所以在exomePeak2最终输出的表格中,其实是基于merge的peak所计算的统计值,本身已经包含了一些positive bias了。而差异甲基化也是基于所有样本peak calling后得到的peak进行的统计。

回复2:

那个log2FC是peak calling时针对sliding window用的filter,而输出的结果是在peak 层面上从新计算的统计值,并未和sliding window共用filter。为了避免给后来使用者造成困惑,我在更新的版本中将默认的peak calling log2FC cutoff改成0了 (在peak calling中log2FC并不影响很大,主要的影响还是p value)。

这个结果中已经有了Peak区间的相关基因注释,但是没有功能区域注释,即所有文章中最常见的这幅图:

image

对于左图,我们这里给大家介绍绘制m6A修饰位点在基因组上的分布特征图可视化包:Guitar包

Guitar包与exomePeak2开发者来自同一个课题组,熟悉这个课题组的应该知道他们在关于m6A的分析上开发了许多的包。

这个包目前维护比较少,为了避免踩坑,建议安装"2.6.0"的版本。

Guitar包出来的结果特征如下:

image

Figure 3: m6 A sites on mRNA and lncRNA. In mRNA, the strongest binding sites (“IP/input ratio” larger than 8) are highly enriched near stop codon side of 3󸀠 UTR and deficient on TSS (transcription starting site) side of 5󸀠 UTR and the phenomena are more prominent than lowly methylated sites. In contrast, the m6 A sites are almost uniformly distributed on lncRNA despite the “IP/input ratio” specified. Please note that, in this figure, the size of 5󸀠 UTR, CDS, and 3󸀠 UTR reflects their true width within the transcriptome, so the 5󸀠 UTR region is much shorter compared with the other two components. This result is based on peaks called on human HepG2 dataset [10].

参考:Biomed Research International, 28 Apr 2016, 2016:8367534

代码如下:

rm(list=ls())
options(stringsAsFactors = F)

# load package
library(Guitar)
package.version("Guitar")
# [1] "2.6.0"

stBedFiles <- list("data/KO1/Mod.bed")
txdb <- makeTxDbFromGFF(file = "data/KO1/Mus_musculus.GRCm38.101.gtf.gz", 
                        format="gtf", 
                        dataSource="Ensembl", 
                        organism="Mus musculus")

p <- GuitarPlot(txTxdb = txdb, 
                stBedFiles = stBedFiles, 
                headOrtail = FALSE,
                enableCI = FALSE, 
                mapFilterTranscript = TRUE, 
                pltTxType = c("mrna"), 
                stGroupName = "KO1")

p <- p + ggtitle(label = "Distribution on mRNA") + 
         theme(plot.title = element_text(hjust = 0.5)) + theme_bw()

png(file="data/KO1_guitarPlot_mRNA.pdf",width=8,height=6)
print(p)
dev.off()

png(filename="data/KO1_guitarPlot_mRNA.png",width = 1000,height = 800, res = 180)
print(p)
dev.off()

结果图如下:Peaks主要富集在终止密码子以及3'UTR上。

image

对于右图,一般用ChIPseeker软件来进行区间注释。

rm(list=ls())
options(stringsAsFactors = F)
#BiocManager::install("ChIPseeker",ask = F)
library(ChIPseeker)
library(org.Hs.eg.db)
library(clusterProfiler)
library(GenomicFeatures)

# annotation file gtf
txdb <- makeTxDbFromGFF(file = "data/KO1/Mus_musculus.GRCm38.101.gtf.gz", format="gtf", 
                        dataSource="Ensembl", organism="Mus musculus")

# overlap
peak_file <- readPeakFile("data/KO1/Mod.bed")

## peak annotation
#region select:"Promoter", "5UTR", "3UTR", "Exon", "Intron", "Downstream", "Intergenic"
peak_anno <- annotatePeak(peak_file,
                          tssRegion = c(-3000, 3000),
                          TxDb = txdb,
                          assignGenomicAnnotation = TRUE,
                          genomicAnnotationPriority = c("5UTR", "3UTR", "Exon","Intron","Intergenic"),
                          addFlankGeneInfo = TRUE,
                          flankDistance = 5000)

pdf(file = "KO1.Anno.Pie.pdf",width = 6,height = 5)
plotAnnoPie(peak_anno)
dev.off()

png(filename="KO1.Anno.Pie.png" ,width=1000, height=850, res=200)
plotAnnoPie(peak_anno)
dev.off()

注释结果如下:

image

如果不喜欢这种注释,当然还可以直接用bedtools进行注释~

下一期分享另类可视化方法,如何与文献中的图片一样好看!

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