单细胞转录组单细胞转录组视...scRNA-seq

单细胞转录组学习笔记-1

2019-06-10  本文已影响53人  刘小泽

刘小泽写于19.6.10
笔记目的:根据生信技能树的单细胞转录组课程探索smart-seq2技术相关的分析技术
课程链接在:http://jm.grazy.cn/index/mulitcourse/detail.html?cid=53

整个课程的框架

分为了5个单元,目前更新了3个单元,其中第一单元为背景介绍,包括单细胞转录组近10年的发展历程,以及两大主流技术smart-seq2(力求检测到单个细胞的基因数量)和10x(追求检测到的细胞数量)的介绍;第二单元加入了常规转录组的分析流程;第三单元重点利用smart-seq2技术得到的结果,结合三个R包进行分析;未来第4个单元将会整合公共数据库(TCGA、METABRIC)以及文献中的数据集进行整合分析;最后一部分就是展望,介绍10X的数据分析

蓬勃发展的单细胞转录组

与普通bulk转录组最大的区别就是:普通的是以一群细胞为一个样本,最后得到结果是一个均值,而单细胞将精度提高,将一个细胞作为一个样本,从而可以看出细胞的异质性

目前单细胞领域文章发表量迅速升高,有的团队一年可以出8-9篇CNS,最著名就是北大的汤富酬教授研究发育生物学领域,另外肿瘤、免疫研究相关也十分火热

不管怎样,单细胞转录组数据到了生信工程师手中,即使生物背景知识可能不完全理解,但他确实可以通过数据分析去说明某些事情。

推荐一个网站:https://omictools.com/single-cell-rna-seq-category

首先原始数据产出就有两种主流途径:测更多的细胞(以10X为主打)和测更多的基因(以smart-seq2为主打);

然后数据就要经过一系列的质控才能开始上游分析,也就是预处理阶段 ,也是两种方法:UMI、ERCC。因为单细胞精度太高,每个细胞都是独特的,和普通的Bulk RNA-seq不同,材料不容易获得,不太好做重复,因此通过生物学重复来评价技术手段/数据质量的方法不靠谱。

关于QC的注意点:
QC不是仅仅对于下机的fq数据有效,它要在每一个分析环节都有体现。
主要包括:

  • 一般的diagnostic plots: GC content, adapter, kmer, duplicated, base pair quality
  • mapping reads/rate
  • total sequencing reads (library size)
  • the number of detected genes:检测dropouts,也就是实际有表达却没被检测到的基因
  • ERCC spike-ins content
  • the percentage of housekeeping genes, cell cycle genes, highly expressed genes, mitochondrial genes
  • overall gene expression patterns

质控的表达矩阵要进行归一化,因为不同的细胞有不同特征,另外实验条件也不同;这对于解释单细胞数据是至关重要的。单细胞的样本量相比bulk实在小太多,因此更容易引入技术噪音,这个必须去除;

加入了降维这重要的一步,因为细胞数量太多,也就是要分析的样本数量要几百甚至几千,于是会产生几百或几千的维度(可以试想一下常见的三维、四维空间);

找差异基因、找marker基因(和差异基因不同,它不需要有差异,只需要有重要的生物学意义)、根据基因重要性进行细胞分群

看文献

构建文库

综述:Comparative Analysis of Single-Cell RNA Sequencing Methods. 2017, (doi: 10.1016/j.molcel.2017.01.023.)

涉及到了6中文库构建方法(CEL-seq2, Drop-seq, MARS-seq, SCRB-
seq, Smart-seq, and Smart-seq2),可以再结合相关的每一个文库找6篇文章
文章发现:Smart-seq2可以在每个细胞中找到最多的基因,同样费用比较高;检测少量细胞时,MARS-seq、SCRB-seq、Smart-seq2更有效

归一化

文献1:Assessment of Single Cell RNA-Seq Normalization Methods,2017 (doi: 10.1534/g3.117.040683)

评价了几种归一化方法:

文献2:Performance Assessment and Selection of Normalization Procedures for Single-Cell RNA-Seq, 2019 (DOI:https://doi.org/10.1016/j.cels.2019.03.010)

主要研究了scone方法:a flexible framework for assessing performance based
on a comprehensive panel of data-driven metrics

(http://bioconductor.org/packages/scone/)

另外方法还有很多,比如:LSF(Lun Sum Factors),BigNorm, Scnorm, BASiCS, RLE(size factor relative log expression)

降维

PDF: https://lib.ugent.be/fulltxt/RUG01/002/349/740/RUG01-002349740_2017_0001_AC.pdf 值得好好阅读,讲了许多关于降维原理和应用的知识

文中1.5.1部分(Clustering high-dimension to identify subtypes)写出:

Importantly, the reduced dimensionality data are less noisy than the high-dimensional data bust lose some of the biological variance.

文章1:PCA, MDS, k-means, Hierarchical clustering and heatmap.

文章2:Outlier Preservation by Dimensionality Reduction Techniques
"MDS best choice for preserving outliers, PCA for variance, & T-SNE for clusters"

鉴定细胞群

每个术语都对应一篇文献

综述:A systematic performance evaluation of clustering methods for single-cell RNA-seq data (SC3 and Seurat show the most favorable results)

关于各种单细胞工具:https://www.scrna-tools.org/
文章在:Exploring the single-cell RNA-seq analysis landscape with the scRNA-tools database

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